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一、制片
選無自發性熒光的石英玻片或普通玻片，洗凈后浸泡于無水/醇和乙氧,基乙,烷等量混合液中。用時取出用綢布擦凈。將待檢樣品如組織塊剪成適當大小印壓于玻片上。也可采用冰凍切片或石蠟切片樣品。
二、固定
除研究細胞表面抗原或不穩定抗原可不固定外，一般均應固定。
三、水洗
固定后以冷的0.01 Mol/L pH7.4PBS液浸泡沖洗，以蒸餾水沖洗，防止自發性熒光。
四、染色
染色分直接染色法與間接染色法。
1. 材料與試劑
(1)熒光抗體，稀釋至應用濃度。
(2)0.01 Mol/LpH7.4PBS液
(3)9份甘油加1份pH7.4PBS液即為甘油緩沖液。甘油有減少非特異性熒光的作用。
(4)帶蓋方盤
2. 直接染色法
(1)將固定好的玻片置于濕盤中，滴加熒光抗體染色液，以覆蓋為度，加蓋，37℃感做30
min~45min。
(2)PBS沖洗3次，每次沖洗3 min，即3x3沖洗。
(3)蒸餾水沖洗。
(4)滴甘油緩沖液一滴，封片，熒光顯微鏡檢查。
3. 間接染色法
(1)檢查抗原:
①取固定標本，加已知的免疫血清，37℃孵育30 min。
②以PBS液3x3沖洗。
③再加熒光標記的抗抗體，37℃℃孵育30 min。
④PBS 3x3沖洗。
⑤H2O沖洗，涼干。
6加甘油緩沖液，封片、鏡檢。
(2)檢查抗體:
①免疫后動物的淋巴組織涂片，自然干燥，甲醇固定，
2)滴加相應抗原液(按1:100~1:500稀釋)，37℃孵育30 min。
③PBS液3x3沖洗。
④加熒光抗體，37℃孵育30 min。
⑤PBS液3x3沖洗。
⑥水洗，涼干。
⑦加甘油緩沖液，封片、鏡檢。
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